Scuola di Farmacia e Nutraceutica

Scuola di Farmacia e Nutraceutica - Data stampa: 20/04/2024

L’obiettivo finale del corso è di dare le opportune conoscenze circa le perdite economiche provocate dai più diffusi parassiti negli animali da reddito, nonché  di fornire conoscenza relative alle principali strategie di controllo. Conoscenza delle principali metodologie di laboratorio per l'analisi di proteine e acidi nucleici. Interpretazione dell'accetabilità di un risultato di laboratorio.

Programma Modulo di Malattie parassitarie

PARTE GENERALE

Concetto di malattia parassitaria. Danni causati dai parassiti al patrimonio zootecnico. Aspetti socio-economici delle malattie parassitarie. Principi di profilassi e controllo delle malattie parassitarie.

 PARTE SPECIALE

Principali malattie sostenute da protozoi, cestodi, digenei, nematodi, insetti e aracnidi nei PET e nelle specie di interesse zootecnico.

Nematodi generale, Strongili Gastro-intestinali generale, Haemonchus, Ostertagia, Trichostrongylus, Cooperia, Nematodirus, Chabertia, Oesophagostomum, Strongyloides, Trichuris, Trichinella, Ossiuri

Strongili gastronitestinali dei Cavalli

 Strongili broncopolmonari, Dictyocaurus, Muellerius, Protostrongylus, Neostrongylus, Cystocaulus,  Angiostrongylus, Crenosoma, Oslerus, Aelurostrongylus

 Filarie del cane, Ascaridi ed Ancylostomi

 Fasciola hepatica, Paramfistoma, Dicrocoelium dendriticum

 Tenia saginata, Tenia solium, Tenia hydatigena, Tenia multiceps 

Echinococco, Moniezia

 Protozooi, Eimeria, Isospora, Toxoplasma, Neospora, Giardia, Cryptosporidium, Babesia, Theileria

 Acari (rogne)

 Zecche, Pidocchi, Pulci

 Miasi

Programma modulo di Diagnostica di Laboratorio:

Principi generali di Diagnostica di Laboratorio:  Fattori pre-analitici, analitici e post-analitici che influenzano i risultati di un test di laboratorio. La variabilità analitica:  Attendibilità, Precisione, Accuratezza e specificità, Sensibilità analitica, limite di rilevabilità e limite di quantificazione. Il significato dei valori di riferimento. Specificità e sensibilità diagnostica.

 Tecniche immunochimiche. Struttura delle immunoglobuline. Produzione di anticorpi monoclonali e policlonali. Anticorpi coniugati. Reazione antigeni-anticorpi. L’agglutinazione e l’immunoprecipitazione. Metodi basati sulla formazione di immunoprecipitati: immunodiffusione in gel di agar; immunodiffusione radiale semplice. Metodi immunochimici diretti e indiretti: esempi di anticorpi coniugati. Immunoblotting. Dosaggi immunoenzimatici: ELISA

 Elettroforesi: principi generali; definizione della mobilità elettroforetica. Supporti per elettroforesi: gel di agarosio e di poliacrilammide. Elettroforesi di proteine in condizioni native e SDS-PAGE. Elettroforesi delle proteine plasmatiche.

 Tecniche spettroscopiche. Proprietà della radiazione elettromagnetica e sua interazione con la materia. Spettroscopia nell'UV e nel visibile. La legge di Lambert-Beer. Spettrofotometria: quantificazione di acidi nucleici e proteine. Determinazione della concentrazione di proteine in soluzione: metodi diretti e indiretti.

 Metodi di biologia molecolare.

La reazione a catena della polimerasi (PCR). Real Time PCR: differenze con la PCR tradizionale.

L’esame emocromocitometrico: principi di funzionamento dei moderni analizzatori emocromocitometrici; parametri relativi ai globuli rossi e ai globuli bianchi. Principi di conta al microscopio ottico delle cellule ematiche.

85 ore di studio individuale

Didattica frontale ed esercitazioni pratiche in campo ed in laboratorio

E' prevista attività tutoriale di supporto alla didattica. 

Non obbligatoria

Le modalità generali sono indicate nel regolamento didattico di Ateneo all’art.22 consultabile al link  

http://www.unicz.it/pdf/regolamento_didattico_ateneo_dr681.pdf

L’esame finale sarà svolto in forma orale

I criteri sulla base dei quali sarà giudicato lo studente sono: